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    細胞周期檢測(流式細胞術)

    發(fā)布時間: 2022-10-18  點擊次數(shù): 3219次

    原理


    流式細胞周期檢測是一種常見的檢測細胞增殖情況的方法之一,細胞在不同周期時,其內的DNA含量不同。碘化丙啶(PI)作為一種核酸嵌入型染料,能夠進入固定后的細胞中,與細胞內的核酸結合,其熒光強度與DNA含量成正比。通過流式細胞儀檢測不同細胞中的熒光強度,從而判定不同組別中細胞周期發(fā)生的變化。


    用途


    檢測不同組別或處理對某種細胞周期的改變。


    材料與儀器


    【器材】
    流式細胞儀、移液器、槍頭、離心管、離心機、流式細胞儀、水浴鍋、流式管、濾頭;
    【試劑】0.25% 胰蛋白酶溶液、PBS、RNA酶、PI染液、70% 乙醇溶液(建議提前放入負二十預冷);


    步驟


    1.以腫瘤細胞為例,將正常生長的對照或處理組腫瘤細胞計數(shù),每組取2×105-3×105個細胞鋪板,待細胞貼壁后,將正常培養(yǎng)基替換為無血清1640培養(yǎng)基,同步化20 h,使得所有細胞都進入相同的細胞周期時期;同步完后,將培養(yǎng)基重新替換為正常含血清培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)24 h;
     
    2.用不含EDTA的胰酶將細胞消化,收集細胞,300 g,離心3 min;用吸引器去除培養(yǎng)基,用PBS清洗細胞一次,再次300 g,離心3 min;去除PBS,用提前預冷的70%酒精重懸細胞沉淀,4℃固定過夜;
     
    3.4℃,1000 g,離心3-5 min,去除酒精,用PBS清洗3遍,最后一遍去除PBS;加入300 μL PBS,輕輕吹打,重懸細胞沉淀,加入相應量的Rnase至終濃度100 μg/mL,37 ℃水浴鍋中消化30 min;
     
    4.上機前加入PI(5 mg/mL)至終濃度50 μg/mL,避光孵育15 min;孵育完后,過300目細胞篩,上機檢測;
     
    5.分析數(shù)據(jù)。
      


    注意事項


    1. PI為致癌物質,避免用手直接接觸。

    2. 細胞數(shù)目應該達到2x104個,細胞數(shù)目過少影響實驗結果的準確性。
     
    3.鋪板的細胞數(shù)量以收獲細胞時有足夠的生長空間來動態(tài)調節(jié),現(xiàn)在的流式細胞儀靈敏度很高,不需要太多的細胞。
     
    4. 在制備時,要清洗干凈酒精,特別注意清洗過程中細胞的損失。離心次數(shù)不宜過多,防止細胞丟失。
     
    5. 可以用未處理的細胞調試流式細胞儀。
     
    6.胰酶不加EDTA

     


    常見問題


    Q:酒精固定后細胞難以沉淀下來,導致細胞丟失較多;

    A:可適當延長離心時間和轉速。


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